ISSN:
1432-072X
Source:
Springer Online Journal Archives 1860-2000
Topics:
Biology
Description / Table of Contents:
Zusammenfassung MAK-Säulenchromatographie der Gesamtnucleinsäuren aus autotrophen und gebleichten Zellen von Euglena gracilis, welche für 2 Std mit 32P-Orthophosphat markiert wurden, liefert 6 Komponenten: niedermolekulare RNS (I–III), DNS (IV) und hochmolekulare RNS (V, VI). Das in der DNS-Region eluierte Material konnte mittels Gelfiltration in 32P-DNS, in eine 32P-RNS mit hoher spezifischer Aktivität sowie in 32P-markierte Polyphosphate aufgetrennt werde. Außerdem fanden sich letztere in der 32P-RNS-Fraktion, die relativ fest an die MAK-Säule gebunden bleibt. Eine weitaus bessere Auftrennung der einzelnen RNS-Komponenten gelang mit der Elektrophorese in Polyacrylamid-Gelen. So erschienen in 9.5% Gel 5 Komponenten, darunter die 3 niedermolekularen I–III, welche bei MAK-Chromatographie auftreten. Sie wurden als 4 S Transfer-RNS (I), 5 S ribosomale RNS (II) und 6 S RNS (III) identifiziert. Die hochmolekulare RNS wurde bei Auftrennung in 2,6% Gel in 6 Banden zerlegt. Die der ribosomalen RNS fanden sich als Hauptbanden in der 24 S und 20 S Region des Gels. Aufgrund ihrer Position konnten für die übrigen Komponenten Sedimentationskoeffizienten zwischen 18 S und 9 S berechnet werden. Das elektrophoretische Trennmuster der Gesamtnucleinsäuren aus gebleichten Zellen war sehr ähnlich, wenngleich quantitative Unterschiede zwischen den einzelnen Komponenten bestanden. Bei der Fraktionierung der Nucleinsäuren durch Gel-Elektrophorese im präparativen Maßstab fiel für jede markierte RNS-Komponente genügend Material an, um eine Rechromatographie an MAK und die Bestimmung der Basenzusammensetzung durchzuführen. Außer Transfer-RNS und 5 S RNS wurden 2 Komponenten in 9,5% Gel isoliert, deren Zusammensetzung ribosomaler RNS entsprach. Eine weitere niedermolekulare Komponente wurde als die schnell markierte RNS identifiziert, welche gemeinsam mit der DNS von der MAK-Säule eluiert wird. Die präparative Gel-Elektrophorese der 32P-markierten hochmolekularen RNS in 2,6% Gel lieferte neben mehreren ribosomalen Species auch 32P-RNS mit einer hohen spezifischen Aktivität.
Notes:
Summary MAK column chromatography of total nucleic acids from autotrophic and bleached cells of Euglena gracilis cultured with 32Pi for 2 h resulted in the separation of six labelled components: low molecular RNA (I–III), DNA (IV) and high molecular RNA (V, VI). Gel filtration of the material eluted in the DNA region revealed the presence of 32P-RNA with a high specific activity and of 32P-labelled polyphosphates in addition to 32P-DNA. 32P-polyphosphates were also found among the labelled RNA tenaciously bound to the MAK column. A far better resolution of the RNA components, however, was achieved by polyacrylamide-gel electrophoresis. On a 9.5% gel five main fractions were resolved among which appeared the components I–III isolated by MAK chromatography. They were identified as 4 S transfer RNA (I), 5 S ribosomal RNA (II) and 6 S RNA (III). The high molecular RNA gave rise to six bands when a 2.6% gel was used. From these the ribosomal RNA migrated as two bands in the 24 S and 20 S region of the gel. Based upon these values sedimentation coefficients from 18 S to 9 S were calculated for the others. The electrophoretic pattern of total nucleic acids from bleached cells was rather similar; only quantitative differences were observed. Fractionation of the nucleic acids by polyacrylamide-gel electrophoresis on a preparative scale provided enough material of each labelled RNA component to perform a rechromatography on MAK and to determine the base composition. Besides the 4 S transfer RNA and the 5 S RNA two RNA components with a ribosomal type base composition were isolated on a 9.5% gel. Another one was identified as the rapidly labelled RNA which is eluted with the DNA from the MAK column. Preparative gel electrophoresis of the labelled high molecular RNA (2.6% gel) revealed the presence of several ribosomal species in addition to 32P-RNA components with a high specific activity.
Type of Medium:
Electronic Resource
URL:
http://dx.doi.org/10.1007/BF00412092
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